1、实验动物与比较医学 Laboratory Animal and Comparative MedicineApr.2023,43(2)(3):63-69.DOI:10.3969/J.ISSN.1671-9964.2013.03.011.XIANG D D,WEI X F,HU J H,et al.Detection of murine Norovirus from naturally and experimentally infected laboratory mice by RT-PCR methodJ.J Shanghai Jiaotong Univ Agric Sci,2013,31(3)
2、:63-69.DOI:10.3969/J.ISSN.1671-9964.2013.03.011.29李晓波,付瑞,王淑菁,等.小鼠诺如病毒感染实验小鼠的抗体变化规律分析J.实验动物与比较医学,2021,41(4):343-350.DOI:10.12300/j.issn.1674-5817.2020.127.LI X B,FU R,WANG S J,et al.Analysis of antibody changes in laboratory mice infected with murine NorovirusJ.Lab Anim Comp Med,2021,41(4):343-350.DO
3、I:10.12300/j.issn.1674-5817.2020.127.30肖建鹏,马莉珍,刘姗,等.实验小鼠感染鼠诺如病毒的检测J.热带医学杂志,2011,11(4):392-394,403.XIAO J P,MA L Z,LIU S,et al.Detection of murine noroviruses from laboratory miceJ.J Trop Med,2011,11(4):392-394,403.31COMPTON S R.Prevention of murine norovirus infection in neonatal mice by fosteringJ.
4、J Am Assoc Lab Anim Sci,2008,47(3):25-30.32BUXBAUM L U,DERITIS P C,CHU N S,et al.Eliminating murine norovirus by cross-fosteringJ.J Am Assoc Lab Anim Sci,2011,50(4):495-499.33KIM H,BANG J,BAEK S H,et al.Eliminating murine Norovirus,Helicobacter hepaticus,and intestinal protozoa by embryo transfer fo
5、r an entire mouse barrier facilityJ.Exp Anim,2022,71(1):28-35.DOI:10.1538/expanim.21-0026.34KASTENMAYER R J,PERDUE K A,ELKINS W R.Eradication of murine norovirus from a mouse barrier facilityJ.J Am Assoc Lab Anim Sci,2008,47(1):26-30.35PARK G W,LINDEN K G,SOBSEY M D.Inactivation of murine norovirus,
6、feline calicivirus and echovirus 12 as surrogates for human norovirus(NoV)and coliphage(F+)MS2 by ultraviolet light(254 nm)and the effect of cell association on UV inactivationJ.Lett Appl Microbiol,2011,52(2):162-167.DOI:10.1111/j.1472-765x.2010.02982.x.36WIELICK C,LUDWIG-BEGALL L F,DAMS L,et al.The
7、 use of germicidal ultraviolet light,vaporised hydrogen peroxide and dry heat to decontaminate face masks and filtering respirators contaminated with an infectious norovirusJ.Infect Prev Pract,2021,3(1):100111.DOI:10.1016/j.infpip.2020.100111.（收稿日期：2022-08-16 修回日期：2022-12-18）（本文编辑：张俊彦，富群华，丁宇菁，赵宇朋）引用
8、本文刘芳妮,吕军苹,柯跃华,等.北京地区实验小鼠诺如病毒流行情况J.实验动物与比较医学,2023,43(2):205-212.DOI:10.12300/j.issn.1674-5817.2022.126.LIU F N,LU J P,KE Y H,et al.Prevalence of mouse norovirus in experimental mice in BeijingJ.Lab Anim Comp Med,2023,43(2):205-212.DOI:10.12300/j.issn.1674-5817.2022.126.*实验动物与比较医学 有关实验动物福利伦理内容的说明本刊是我国
9、实验动物科学与比较医学领域的一本专业学术期刊，严格遵守国家实验动物相关法律、法规和标准，包括但不局限于实验动物管理条例（2017年3月1日修订版）和实验动物 福利伦理审查指南（GB/T 358922018）等，同时参考借鉴国际生物医学期刊关于动物实验研究报告的相关指南共识（如ARRIVE 2.0、IGP 2012、IAVE Guidelines 2010等）。因此，本刊对所有涉及动物实验的来稿均需审查实验动物福利与伦理相关内容。现将一些具体要求说明如下：1.涉及动物实验的来稿，需提供实验动物生产许可证和质量合格证，以及动物实验场所的实验动物使用许可证。以上证明须与使用动物种类及动物实验单位名称
10、相匹配，并在正文中列出其对应的许可证编号。2.涉及动物实验的来稿，需在考虑3R（替代、减少和优化）原则的基础上设计动物实验，并提供作者单位实验动物福利伦理委员会（或相关机构）出具的实验动物福利伦理审查批件。批件中所列内容须与投稿文章相吻合，并在正文中列出对应的批准编号。3.实验动物的用药，尤其是麻醉镇痛用药必须优先使用药用级麻醉剂，特别是当涉及存活手术的动物实验时。鉴于无法确定非药用级麻醉剂（如三溴乙醇、水合氯醛等）的相关性状及对实验动物的影响，从而不能保障实验动物福利及研究结果的可靠性，而且目前已有更优的市售麻醉药剂可供选择，因此本刊不建议使用上述试剂。如确需使用，请提供充足理由说明及相应的批准文件。4.涉及肿瘤动物模型的研究，本刊参考国内及国际通用准则，建议单个肿瘤体直径不超过20 mm（小鼠）或40 mm（大鼠）且不出现明显的肿瘤溃疡。如投稿文章有超出上述标准的研究内容，需提交作者单位相关肿瘤动物模型研究的指导原则文件，以及从科学角度判断肿瘤体积合理性的依据材料。实验动物与比较医学 编辑部212
