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饲料中大肠菌群的测定 GBT 18869-2019.pdf

1、GB/T18869-2019杯,8000r/min10000r/min均质1min2min,或放入盛有225mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1min2min,制成10倍稀释的样品匀液。注:含有硬物的原料,如肉骨粉等里面含骨渣易扎破均质袋,不宜用拍击式均质器,8.2.1.2液态样品:以无菌吸管吸取25mL样品置于盛有225L磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)或其他无菌容器中,置于振荡器中振荡,充分混匀,制成10倍稀释的样品匀液。注:黏稠样品宜采用周态称量法,8.2.1.3用1mL无菌吸管或微量移液器吸取10倍稀释的祥品匀液1mL,沿管壁

2、缓缓注入9mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中(注意吸管和吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换一只1L无菌吸管反复吹打,使其混合均匀,制成100倍稀释的样品匀液。8.2.1.4根据对样品污染状况的估计,按上述操作,依次制成十倍递增系列稀释样品匀液。每递增稀释一次,换一只1mL无菌吸管或吸头。从制备样品匀液至样液接种完毕,全过程不超过15mi。8.2.2乳精发酵试验每个样品选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以选择原液),每个稀释度接种3管乳糖胆盐发酵管,每管接种1mL(如接种量超过1mL,则用双料乳糖胆盐发酵管),置36土1培养箱内,培养24h士2h,观察倒管内是否有气泡产生,

3、如未产气则可报告为大肠菌群阴性,如有产气者,则按8.2.3和8.2.4程序进行操作。8.2.3分离培养将产气的发酵管分别接种在伊红美蓝琼脂平板上,置36士1培养箱内,培养18h24h,然后取出,观察菌落形态,并做确证试验,8.2.4确证试验在上述平板上,挑取可疑菌落1个2个进行革兰氏染色,同时接种乳糖发酵管,置36士1培养箱内,培养24h土2,观察产气情况。凡乳糖管产气、革兰氏染色为阴性的无芽孢杆菌,即可报告大肠菌群为阳性。8.2.5试验程序图乳糖胆盐发酵法试验程序图见附录B。8.3IST发酵法8.3.1试样的稀释操作同8.2.1,8.3.2初发酵试验每个样品选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以选择原液),每个稀释度接种3管LST肉汤,每管接种1mL(如接种量超过1mL,则用双料LST肉汤),36士1培养24h士2h,观察倒管内是否有气泡产生,24h士2h产气者进行复发酵试验(证实试验),如未产气则继续培养至48h士2h,产气者进行复发酵试验。未产气者为大肠菌群阴性。8.3.3复发酵试验(证实试验)用接种环从产气的IST肉汤管中分别取培养物1环,移种于BGB管中,36士1培养48h士2h,

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