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2022年医学专题—神经细胞培养2(1).ppt

上传人:g****t 文档编号:2504103 上传时间:2023-06-26 格式:PPT 页数:111 大小:17.34MB
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资源描述

1、神经细胞(shn jn x bo)培养,第一页,共一百一十一页。,第一节:细胞培养的基本知识,1定义:组织培养(Tissue culture):细胞培养(cell culture):器官培养(piyng)(organ culture):统称为体外培养(In vitro),第二页,共一百一十一页。,2 组织(zzh)或细胞培养的优点:,1):研究对象是活细胞 2):研究条件可以人为的控制3):研究的样本可以达到比较均一性4):研究的内容便于观察、检测和记录5):研究的费用相对比较经济(jngj)6):可作为一些遗传物质的运载细胞7):干细胞的广泛应用前景,3 组织或细胞培养的不足:1)与体内条件

2、存在(cnzi)差异;2)细胞培养存在(cnzi)一定的不稳定性,第三页,共一百一十一页。,培养细胞学的研究(ynji)内容,1 培养细胞学在病毒学中的应用2 细胞生物学的基础研究:细胞培养使细胞生物学迅速发展3 细胞工程学的研究手段,利用细胞融合及杂交技术,进行细胞工程的研究与开发。4 干细胞的培养及应用5 淋巴细胞培养技术的应用6 遗传性疾病的产前检查7 细胞作为毒性实验及生物安全性实验的工具8 细胞培养在现代生物技术中应用很广,如基因分离,基因测序与表达,基因转移(zhuny)与重组,癌基因的研究等。,第四页,共一百一十一页。,4 培养细胞的特性 1)培养细胞生长方式(fngsh):a

3、贴附生长型细胞(大多数)b 悬浮生长型细胞(少数)2)培养细胞生长特点:贴附;接触抑制;密度依赖性,第五页,共一百一十一页。,第六页,共一百一十一页。,第七页,共一百一十一页。,5 培养细胞生长的条件 1)细胞的营养需要:a 基本营养物质:氨基酸、维生素、碳水化合物及一些无机离子;b 营养因子等物质 2)细胞的生存环境:a 温度:哺乳动物(brdngw)和人类为3537;鸟类为38.5 b 气相及PH 值:O2及CO2的值:CO2=5%;PH=7.27.4 c 渗透压:260320m mol/L,第八页,共一百一十一页。,3)无污染及无毒:体外培养的细胞必须生长于无污染及无毒的环境!无毒:与细

4、胞直接接触者培养器皿、底物、培养基,蒸馏水等;间接接触者配制培养基的器皿、瓶盖、瓶塞等 无污染:微生物及交叉污染(wrn),(霉菌污染(wrn)常见),第九页,共一百一十一页。,6 常用(chn yn)的培养用液及培养基,培养用液:水平衡盐溶液()(见表)作用:消化液胰蛋白酶液(%)二乙烯四乙酸(y sun)二钠()胶原酶:甘氨酸 羟脯氨酸敏感培养基:1天然培养基(血清,血浆,组织浸出液,水解乳蛋白)2 合成培养基(S F12()等,第十页,共一百一十一页。,常用(chn yn)的平衡盐溶液(g/L),第十一页,共一百一十一页。,细胞(xbo)计数法:,原则(yunz):取0.1 ml细胞悬液

5、 加 Hanks 液0.9ml,混匀后滴于血细胞计数板上,在低倍显微镜下计数四角大方格内细胞。计数过程中对于大方格边缘压线按照数上不数下,数左不数右的原则。细胞浓度=,4个大方格(fn)内细胞数,4,104 稀释倍数=细胞数/ml,第十二页,共一百一十一页。,细胞(xbo)活性的检查,台盼蓝染色:0.2 ml 细胞悬液加0.4 ml台盼蓝溶液混合,滴少许于载波片上,低倍镜计数200细胞,算比率,正常(zhngchng)不着色,死细胞为兰色,细胞活力(%)=(细胞总数(zngsh)-着色细胞数)/总细胞数100%,第十三页,共一百一十一页。,第 二节:神经细胞(shn jn x bo)体外培 养

6、的 基本概念和方案,神经细胞培养的类型 1 原代培养 原代培养(primary culture):指从活体获得细胞、组织(zzh)或器官在体外条件下进行的第一次培养 传代培养(subculture):当细胞持续生长到达一定密度之后,就应当将细胞分成两部分(或更多)至新的培养器皿并补充新的培养液为传代培养。2 细胞系培养,第十四页,共一百一十一页。,一 神经元的原代培养(piyng)(Primary culture),一、组织来源:1)种属:大鼠 小鼠 家鸡 瓜蟾 海兔 蜗牛 水蛭 等2)年龄:一般(ybn)为胚胎或新生动物组织神经胶质细胞:生后早期大部分神经元:胚胎末期颗粒细胞:生后两周以内主

7、要根据轴突和树突广泛分枝发育之前培养,第十五页,共一百一十一页。,二、常用试剂1)培养液 A DMEM:B F12 培养液 C DMEM/F12 培养液 D 无血清培养液加神经营养因子 E Neurobasal 培养液2)D-Hank液(其中可加入牛血清白蛋白3g/L)(HBSS)聚L-赖氨酸:处理培养皿(瓶)(10mg/L)5-10 min神经营养因子:睫状神经营养因子(ciliary neurotrophic factor,CNTF):支持交感神经、副交感神经和感觉神经的生长与存活;脑源性神经营养因子(brain derived neurotrophic factor,BDNF):支持外周

8、和中枢特殊细胞群体(qnt)的神经细胞;硷性成纤维生长因子(basic fibroblast growth factor,bFGF)等,第十六页,共一百一十一页。,三、培养操作过程 新生13d 大鼠或者胚胎18-19d大鼠,麻醉后75%酒精浸泡消毒,断头后移入超净工作台,无菌条件下开颅,快速取脑,置于D-Hanks液中,仔细剥除脑膜和血管,小心剥离脑组织(海马),放入10ml小瓶中剪碎,加入0.25%胰蛋白酶放入37培养箱,定期振摇促消化。消化约20min,用含血清的DMEM培养液终止消化,吸管反复轻柔吹打,用200目不锈钢筛网过滤,将滤液分散组成制成细胞悬液,1000rpm/min离心、洗细

9、胞两次,每次10min,吸收细胞悬液,用血球(xuqi)记数板快速计数细胞数,用含10%胎牛血清的DMEM培养基,稀释细胞制成一定浓度细胞悬液,接种于经多聚赖氨酸处理过的24孔培养板或培养瓶内(板孔放置0.80.8cm的小盖玻片),放入5%CO2培养箱,37培养。,第十七页,共一百一十一页。,四、神经元的鉴定:神经元特异性烯醇化酶(Neuron specific enolose NSE)、微管相关(xinggun)蛋白(Microtubule associated protein MAP2)神经元,五、神经元的纯化:胞嘧啶阿拉伯糖,培养2d 后用含510 mol/L 胞嘧啶阿拉伯糖的培养24

10、hour,然后改用常规培养液。特殊培养液:neurobasal 培养基,第十八页,共一百一十一页。,培养(piyng)过程中注意事项,1)培养底物的处理:多聚赖氨酸和多聚鸟氨酸、PEI 细胞外基质成分(胶原)细胞黏附分子 单层非神经细胞 单层的胶质细胞2)胰蛋白酶的作用时间(shjin):3)细胞合适的换液时间:大脑皮质 不用经常换液 海马神经元应半量换液 胶质细胞经常换液,第十九页,共一百一十一页。,六、神经元的观察:刚分离出的神经元呈圆形,用倒置显微镜观察有明显的光晕。接种一般在2-6小时可贴壁;8小时已有纤细有突起长出24小时后可见(kjin)细胞体积开始增大,呈圆形或椭圆形。生长良好的

11、细胞可见(kjin)胞体周围有明显的光晕,立体感强,突起以单、双突起为主培养至第4天,神经元胞体明显增大,形态多样,有些具有分枝的突起,培养7天后,神经元形态基本成熟,具有光滑的胞体,发育良好的突起。,第二十页,共一百一十一页。,第二十一页,共一百一十一页。,第二十二页,共一百一十一页。,第二十三页,共一百一十一页。,MAP-2,第二十四页,共一百一十一页。,第二十五页,共一百一十一页。,第二十六页,共一百一十一页。,A,B,NSE stain neuron,TH stain neuron,第二十七页,共一百一十一页。,Confocal laserscan images of organtyp

12、ic slice culture from avian hippocampus,第二十八页,共一百一十一页。,Slice culture.Lucifer yellow stain(bar 50m),N,第二十九页,共一百一十一页。,运动神经元 Dil标记(bioj),第三十页,共一百一十一页。,Purkinje cell in culture(PEP-19),第三十一页,共一百一十一页。,第三十二页,共一百一十一页。,第三十三页,共一百一十一页。,第三十四页,共一百一十一页。,第三十五页,共一百一十一页。,第三十六页,共一百一十一页。,第三十七页,共一百一十一页。,第三十八页,共一百一十一页。

13、,第三十九页,共一百一十一页。,第四十页,共一百一十一页。,二、胶质细胞(xbo)的培养,第四十一页,共一百一十一页。,胶质细胞 纤维性 的分类(fn li):a大胶质细胞 星形胶质细胞 原浆性 少突胶质细胞 b小胶质细胞周围神经系统主要是施万细胞,第四十二页,共一百一十一页。,根据免疫组化反应分类(fn li):型星型胶质细胞和型星型胶质细胞:,第四十三页,共一百一十一页。,研究(ynji)胶质细胞的方法,1)从未成熟的脑组织分离、培养获得(hud)大量胶质细胞2)已经开发出能识别胶质细胞的免疫学标志物。,第四十四页,共一百一十一页。,利用细胞(xbo)培养可研究胶质细胞(xbo)的特性,受

14、体的表达:星型胶质细胞和少突胶质细胞可与传统的神经递质发生反映。(型胶质细胞可表达25种神经配体的受体神经营养因子的分泌:酶的诱导、蛋白质的合成神经递质的摄取髓鞘的形成神经的局部免疫(miny)反应代谢过程,第四十五页,共一百一十一页。,胶质细胞培养的局限性,1 大多来自于未成熟大脑,所以不能达到与体内相一致的成熟程度,即使成年也可能有干细胞的存在。其形态可能随培养条件而发生变化。存在不同(b tn)的细胞亚群 其性质有赖于他们与特殊神经元相互作用。,第四十六页,共一百一十一页。,培养(piyng)用液,培养基:MEM450ml+血清 45ml+GLU-谷氨酰胺 青链霉素溶液8ml葡萄糖-谷氨

15、酰胺 青链霉素溶液(100ml):葡萄糖 30g;谷氨酰胺 100mmol/l;青霉素 2.5 105U;链霉素 2.510 g胰蛋白酶:0.25%少突胶质细胞的限定培养液:F12 与DMEM(高糖,4.5 g葡萄糖/L 1:1混合(hnh)后加入:BSA:终浓度为0.66 mg/ml,胰岛素:10ng/ml;孕酮:20 nmol/l;腐胺:100mol/l;碳酸氢钠:3.6 g/l;硒:5ng/ml;T3:30nmol/l;转铁蛋白:50 g/ml.,第四十七页,共一百一十一页。,培养的方法:1)取材 生后1天的大鼠,75%酒精消毒,断头,置于培养皿中 2)沿纵轴剪开皮肤和颅腔,取出大脑皮质

16、,去除嗅球等 3 去除脑膜,洗涤(Hanks液)4)组织剪成碎块,37缓慢振荡约10 min。5)胰蛋白酶(y dn bi mi)消化6)重复吹打,自然沉淀数次,收集细胞悬液,第四十八页,共一百一十一页。,(或者(huzh)6)移入试管吹打或加入胰蛋白酶形成单细胞悬液7)加入完全培养基终止8)调整细胞密度104106/cm2接种于培养瓶,常规CO2孵育箱培养9)接种3天后换液,以后每两天换液10)传代,0.25%胰蛋白酶消化(覆盖细胞层即可)或着用摇晃的方法,第四十九页,共一百一十一页。,传代时注意事项:a 细胞没有生长到足以(zy)覆盖瓶底壁大部分 表面以前,不要急于传代 b 注意观察不同细胞有不同的消化时间;动作要轻柔,避免损伤细胞 c 首次传代时细胞数量要多一些,使细胞尽快适应新环境鉴定:星形胶质细胞鉴定:胶质原纤维酸性蛋白(Glial fibrillary acid protein GFAP,A2B5)少突胶质细胞 鉴定:GalC(-galactosidase),第五十页,共一百一十一页。,神经胶质细胞分离和纯化(chn hu)流程,第0-12天 大鼠脑皮质(pzh)混合细胞培

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