1、 中华人民共和国国家标准中华人民共和国国家标准GB 5413.92010中 华 人 民 共 和 国 卫 生 部中 华 人 民 共 和 国 卫 生 部 发布 2010-03-26 发布 2010-06-01 实施食品安全国家标准 婴幼儿食品和乳品中维生素 A、D、E 的测定 National food safety standard Determination of vitamin A,D,E in foods for infants and young children,milk and milk products GB 5413.92010 I 前 言 本标准代替GB/T 5413.9-19
2、97婴幼儿配方食品和乳粉 维生素A、D、E的测定。本标准与GB/T 5413.9-1997相比，主要变化如下：抗氧化剂由原来的焦性没食子酸改为抗坏血酸；将处理方法中的加热回流改为恒温皂化操作；增加了标准溶液的校正；将原有的单点定量改为标准曲线法；增加了维生素D回收率的测定；将计算公式进行修改。本标准附录A为规范性附录，附录B为资料性附录。本标准所代替标准的历次版本发布情况为：GB 5413-1985、GB/T 5413.9-1997。GB 5413.92010 1 食品安全国家标准 婴幼儿食品和乳品中维生素 A、D、E 的测定 1 范围 本标准规定了婴幼儿食品和乳品中维生素A、D、E的测定方法
3、。本标准适用于婴幼儿食品和乳品中维生素A、D、E的测定。2 规范性引用文件 本标准中引用的文件对于本标准的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本标准。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本标准。3 原理 试样皂化后，经石油醚萃取，维生素A、E用反相色谱法分离，外标法定量；维生素D用正相色谱法净化后，反相色谱法分离，外标法定量。4 试剂和材料 除非另有规定，本方法所用试剂均为分析纯或以上规格，水为GB/T 6682规定的一级水。4.1-淀粉酶：酶活力1.5 U/mg。4.2 无水硫酸钠。4.3 异丙醇：色谱纯。4.4 乙醇：色谱纯。4.5 氢氧化
4、钾水溶液：称取固体氢氧化钾 250 g，加入 200 mL 水溶解。4.6 石油醚：沸程 30 60。4.7 甲醇：色谱纯。4.8 正己烷：色谱纯。4.9 环己烷：色谱纯。4.10 维生素 C 的乙醇溶液（15 g/L）。4.11 维生素 A、D、E 标准溶液 4.11.1 维生素 A 标准储备液（视黄醇）（100 g/mL）：精确称取 10 mg 的维生素 A 标准品，用乙醇（4.4）溶解并定容于 100 mL 棕色容量瓶中。GB 5413.92010 2 4.11.2 维生素 E 标准储备液（-生育酚）（500 g/mL）：精确称取 50 mg 的维生素 E 标准品，用乙醇（4.4）溶解并
5、定容于 100 mL 棕色容量瓶中。4.11.3 维生素 D2标准储备液（100 g/mL）：精确称取 10 mg 的维生素 D2标准品，用乙醇（4.4）溶解并定容于 100 mL 棕色容量瓶中。4.11.4 维生素 D3标准储备液（100 g/mL）：精确称取 10 mg 的维生素 D3标准品，用乙醇（4.4）溶解并定容于 100 mL 棕色容量瓶中。注：维生素A、D、E标准储备液均须-10以下避光储存。标准工作液临用前配制。标准储备溶液用前需校正，见附录A。5 仪器和设备 5.1 高效液相色谱仪，带紫外检测器。5.2 旋转蒸发器。5.3 恒温磁力搅拌器：20 80。5.4 氮吹仪。5.5
6、离心机：转速5000 转/分钟。5.6 培养箱：60 2。5.7 天平：感量为 0.1 mg。6 分析步骤 6.1 试样处理 6.1.1 含淀粉的试样 称取混合均匀的固体试样约5 g或液体试样约50 g（精确到0.1 mg）于250 mL三角瓶中，加入l g-淀粉酶（4.1），固体试样需用约50 mL 45 50 的水使其溶解，混合均匀后充氮，盖上瓶塞，置于60 2 培养箱（5.6）内培养30 min。6.1.2 不含淀粉的试样 称取混合均匀的固体试样约10 g或液体试样约50 g（精确到0.1 mg）于250 mL三角瓶中，固体试样需用约50 mL 45 50 水使其溶解，混合均匀。6.2
7、测定维生素 D 的试样需要同时做回收率实验。6.3 待测液的制备 6.3.1 皂化：于上述处理的试样溶液中加入约 100 mL 维生素 C 的乙醇溶液（4.10），充分混匀后加25 mL 氢氧化钾水溶液（4.5）混匀，放入磁力搅拌棒，充氮排出空气，盖上胶塞。1000 mL 的烧杯中加入约 300 mL 的水，将烧杯放在恒温磁力搅拌器（5.3）上，当水温控制在 53 2 时，将三角瓶放入烧杯中，磁力搅拌皂化约 45 min 后，取出立刻冷却到室温。6.3.2 提取：用少量的水将皂化液全部转入 500 mL 分液漏斗中，加入 100 mL 石油醚（4.6），轻轻摇动，排气后盖好瓶塞，室温下振荡约
8、10 min 后静置分层，将水相转入另一 500 mL 分液漏斗中，按上述方法进行第二次萃取。合并醚液，用水洗至近中性。醚液通过无水硫酸钠过滤脱水，滤液收入 500 mLGB 5413.92010 3 圆底烧瓶中，于旋转蒸发器上在 40 2 充氮条件下蒸至近干（绝不允许蒸干）。残渣用石油醚转移至 10 mL 容量瓶中，定容。6.3.3 从上述容量瓶中准确移取 2.0 mL 石油醚溶液放入试管 A 中，再准确移取 7.0 mL 石油醚溶液放入另一试管 B 中，将试管置于 40 2 的氮吹仪（5.4）中，将试管 A 和 B 中的石油醚吹干。向试管A 中加 5.0 mL 甲醇（4.7），振荡溶解残渣
9、。向试管 B 中加 2.0 mL 正己烷（4.8），振荡溶解残渣。再将试管 A 和试管 B 以不低于 5000 转/分钟的速度离心 10 min，取出静置至室温后待测。A 管用来测定维生素 A、E，B 管用来测定维生素 D。6.4 测定 6.4.1 维生素 A、E 的测定 6.4.1.1 色谱参考条件 色谱柱：C18柱，250 mm 4.6 mm，5 m，或具同等性能的色谱柱。流动相：甲醇（4.7）。流速：1.0 mL/min。检测波长：维生素A：325 nm；维生素E：294 nm。柱温：35 1。进样量：20 L。6.4.1.2 维生素 A、E 标准曲线的绘制 分别准确吸取维生素 A 标准
10、储备液（4.11.1）0.50 mL、1.00 mL、1.50 mL、2.00 mL、2.50 mL 于50 mL 棕色容量瓶中，用乙醇定容至刻度混匀。此标准系列工作液浓度分别为 1.00 g/mL、2.00 g/mL、3.00 g/mL、4.00 g/mL、5.00 g/mL。分别准确吸取维生素 E 标准储备液（4.11.2）1.00 mL、2.00 mL、3.00 mL、4.00 mL、5.00 mL 于50 mL 棕色容量瓶中，用乙醇定容至刻度混匀。此标准系列工作液浓度分别为 10.0 g/mL、20.0 g/mL、30.0 g/mL、40.0 g/mL、50.0 g/mL。分别将维生素
11、 A、E 标准工作液注入液相色谱仪中（色谱图参见附录 B），得到峰高(或峰面积)。以峰高(或峰面积)为纵坐标，以维生素 A、E 标准工作液浓度为横坐标分别绘制维生素 A、E 标准曲线。6.4.1.3 维生素 A、E 试样的测定 将试液（6.3.3中A管）注入液相色谱仪中，得到峰高(或峰面积)，根据各自标准曲线得到待测溶液中维生素A、E的浓度。6.4.2 维生素 D 的测定 6.4.2.1 维生素 D 待测液的净化 6.4.2.1.1 色谱参考条件。色谱柱：硅胶柱，150 mm 4.6 mm，或具同等性能的色谱柱。流动相：环己烷（4.9）与正己烷（4.8）按体积比1：1混合，并按体积分数0.8%
12、加入异丙醇（4.3）。流速：1 mL/min。波长：264 nm。柱温：35 1。进样体积：500 L。6.4.2.1.2 取约0.5 mL维生素D标准储备液于10 mL具塞试管中，在40 2 的氮吹仪（5.4）上吹干。残渣用5 mL正己烷振荡溶解。取该溶液50 L注入液相色谱仪中测定，确定维生素D保留时间。然后将500 L待测液（6.3.3中B管）注入液相色谱仪中，根据维生素D标准溶液保留时间收集维生素D馏分于试管C中。将试管C置于40 2 条件下的氮吹仪中吹干，取出准确加入1.0 mL甲醇（4.7），残渣振荡溶解，即为维生素D测定液。GB 5413.92010 4 6.4.2.2 维生素
13、D 测定液的测定 6.4.2.2.1 参考色谱条件 色谱柱：C18柱，250 mm 4.6 mm，5m，或具同等性能的色谱柱。流动相：甲醇（4.7）。流速：1 mL/min。检测波长：264 nm。柱温：35 1。进样量：100 L。6.4.2.2.2 标准曲线的绘制 分别准确吸取维生素 D2（或 D3）标准储备液（4.11.3、4.11.4）0.20 mL、0.40 mL、0.60 mL、0.80 mL、1.00 mL 于 100 棕色容量瓶中，用乙醇定容至刻度混匀。此标准系列工作液浓度分别为 0.200 g/mL、0.400 g/mL、0.600 g/mL、0.800 g/mL、1.000
14、 g/mL。分别将维生素 D2（或 D3）标准工作液注入液相色谱仪中，得到峰高（或峰面积)，参见附录 B。以峰高(或峰面积)为纵坐标，以维生素 D2（或 D3）标准工作液浓度为横坐标分别绘制标准曲线。6.4.2.2.3 维生素 D 试样的测定 吸取维生素D测定液（6.4.2.1中C管）100 L注入液相色谱仪中（色谱图参见附录B），得到峰高（或峰面积），根据标准曲线得到维生素D测定液中维生素D2（或D3）的浓度。维生素 D 回收率测定结果记为回收率校正因子 f，代入测定结果计算公式（2），对维生素 D 含量测定结果进行校正。7 分析结果的表述 7.1 维生素 A 含量的计算 维生素 A 含量按
15、（1）计算：mcXs10052/10=（1）式中：X试样中维生素A的含量，单位为微克每百克（g/100 g）；cs 从标准曲线得到的维生素 A 待测液的浓度，单位为微克每毫升（g/mL）；m 试样的质量，单位为克（g）。注：1 g 视黄醇=3.33 IU 维生素 A。以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示，结果保留三位有效数字。7.2 维生素 D 含量的计算 维生素 D 含量按（2）计算：fmcXs=100227/10（2）式中：X试样中维生素D2（或D3）的含量，单位为微克每百克（g/100 g）；cs从标线得到的维生素 D2（或 D3）待测液的浓度，单位为微克每毫升（g/mL
16、）；m 试样的质量，单位为克（g）；GB 5413.92010 5 f 回收率校正因子。注：试样中维生素 D 的含量以维生素 D2和 D3的含量总和计。以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示，结果保留三位有效数字。7.3 维生素 E 含量 维生素 E 含量按（3）计算：100010052/10=mcXs（3）式中：X试样中维生素E（-生育酚）的含量，单位为毫克每百克（mg/100 g）；cs从标准曲线得到的维生素 E 待测液的浓度，单位为微克每毫升（g/mL）；m试样的质量，单位为克（g）。以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示，结果保留三位有效数字。8 精密度 在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值，维生素A、E不得超过算术平均值的5%，维生素D不得超过算术平均值的10%。9 其他 本标准检出限：维生素 A 为 1 g/100 g、维生素 E 为 10.00 g/100 g、维生素 D 为 0.20 g/100 g。GB 5413.92010 6 附录 A（规范性附录）标准溶液浓度校正方法 维生素A、D、E标准储备液配制后需要进行校正，具体操作如下
