1、ICS 11.220 B 41 DB21 辽宁省地方标准 DB21/T 32732020 猪伪狂犬病毒野毒株与 gE 基因缺失疫苗株TaqMan 实时荧光定量 PCR 鉴别方法 A TaqMan Real-time PCR Method for Differentiation of Wild-type Strain from gE-deleted Vaccine Strain of Pseudorabies Virus 2020-06-30 发布 2020-07-30 实施 辽宁省市场监督管理局 发 布 DB21/T 32732020 I 目 次 前言.II 1 范围.1 2 规范性引用文件.
2、1 3 缩略语.1 4 仪器和耗材.1 5 试剂和材料.1 6 样品采集、处理和运输.2 7 荧光 qPCR 操作程序.3 8 结果判定.4 附录 A（规范性附录）溶液配制.6 附录 B（规范性附录）引物和探针.7 DB21/T 32732020 II 前 言 本标准根据GB/T 1.1-2009的有关规定进行制定。本标准由辽宁省农业农村厅提出并归口管理。本标准负责起草单位：辽宁省农业发展服务中心。本标准起草人：兰德松、顾贵波、周维、杨洺扬、李可心、孙世宇、张健、刘贺、李旭、高原、丁静。本标准发布实施后，任何单位和个人如有问题和意见建议，均可以通过来电和来函等方式进行反馈，我们将及时答复并认真
3、处理，根据实际情况依法进行评估及复审。归口管理部门通讯地址：辽宁省农业农村厅（沈阳市和平区太原北街2号），联系电话：024-23447862 标准起草单位通讯地址：辽宁省农业发展服务中心（沈阳市皇姑区宁山东路29号），联系电话：024-88420057 DB21/T 32732020 1 猪伪狂犬病毒野毒株与 gE 基因缺失疫苗株 TaqMan 实时荧光定量 PCR 鉴别方法 1 范围 本标准规定了猪伪狂犬病毒（pseudorabies virus,PRV）野毒株及gE基因缺失毒株的TaqMan荧光PCR检测方法。本标准适用于猪血液、组织脏器、精液、鼻腔拭子和细胞培养物等材料中PRV核酸的检测
4、以及PRV野毒株与gE基因缺失疫苗株病毒核酸的鉴别检测。本标准的实验操作应在生物安全II级实验室（BSL-2实验室）中进行。2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 NY/T 541 兽医诊断样品采集、保存与运输技术规范 3 缩略语 下列缩略语适用于本标准。gD 糖蛋白D（glycoprotein D）gE 糖蛋白E（glycoprotein E）PRV 伪狂犬病病毒（pseudorabies virus）4
5、仪器和耗材 4.1 仪器 荧光PCR仪、高速冷冻离心机（可控温至4，离心速度可达12 000r/min以上）、组织研磨仪或研钵、自动化核酸提取仪（如选用商品化核酸提取试剂盒）、PCR微量离心机、2 8 普通冰箱、-20 以下普通冰箱、-70 以下超低温冰箱、移液器（量程0.1 L2 L、2 L20 L、20 L200 L）。4.2 耗材 无菌无DNA酶的1.5 mL离心管、0.2 mL PCR反应管或八联管或96孔反应板、与移液器匹配的吸头。5 试剂和材料 DB21/T 32732020 2 5.1 DNAzol Reagent：商品化 DNA 提取试剂，2 8 普通冰箱中保存；或商品化核酸提
6、取试剂盒（如磁珠法核酸提取试剂），通常18 25 保存。5.2 无水乙醇：-20 普通冰箱中预冷。5.3 75%乙醇：用无水乙醇和双蒸水配制，-20 普通冰箱中预冷。5.4 PBS：磷酸盐缓冲液（0.02 mol/L pH7.2），配制见附录 A。5.5 8 mmol/L NaOH 溶液，配制见附录 A。5.6 2TaqMan Fast qPCR Master Mix：为商品化探针法实时荧光 PCR 反应专用试剂，包含反应所需的缓冲液、酶、dNTP、Mg+等的预混液，-20 普通冰箱中保存，避免反复冻融。5.7 引物和 TaqMan 探针，序列见附录 B。5.8 阳性对照和阴性对照：阳性对照使
7、用 PRV 野毒株细胞培养物、Bartha-K61 疫苗毒，阴性对照采用灭菌双蒸水或健康猪的组织材料。5.9 除非另有说明，在检测中所用的试剂均为分析纯，实验室用水应符合 GB/T 6682 的要求。6 样品采集、处理和运输 6.1 采样前准备 6.1.1 采样人员 参照NY/T 541中第5.1条的要求。6.1.2 采样工具和器材 参照NY/T 541中第6.10.3条的要求。6.2 样品采集 6.2.1 血液：参照 NY/T 541 中第 6.1 条中猪血液样品采集的要求进行，将采集的血液注入含 1/10 体积4%EDTA 溶液的无菌容器中，充分混匀，编号备检。6.2.2 组织脏器：参照
8、NY/T 541 中第 6.2 条和 6.3 条中的要求进行，将采集的病死猪或剖杀猪主要脏器（脑组织、三叉神经节、扁桃体、肺脏、淋巴结等）或活体采集的扁桃体装入灭菌的 15 mL50 mL 离心管中，编号备检；组织脏器使用组织研磨仪或研钵进行处理后用于核酸提取。6.2.3 精液：参照 NY/T 541 中第 6.10.3 条中的要求进行。6.2.4 鼻腔拭子：参照NY/T 541中第6.4条中的猪鼻腔拭子采集要求进行，将拭子样品放入PBS缓冲液（0.02 mol/L pH7.2）中，编号备检。6.2.5 细胞培养物：细胞培养物反复冻融 3 次，第 3 次解冻后，4 4 000 g 离心 10
9、min，取上清转入新的无菌无 DNA 酶的 1.5 mL 离心管中，编号备用。6.3 样品保存、包装和废弃物处理 参照NY/T 541中第7条的要求。DB21/T 32732020 3 6.4 样品运输 参照NY/T 541中第9条的要求。7 荧光 qPCR 操作程序 7.1 DNA 提取 在实验室的核酸提取区进行。7.1.1 DNAzol 手工提取 7.1.1.1 取 n 个无菌无 DNA 酶的 1.5 mL 离心管，n 为待检样品数+阳性对照+阴性对照，对每个离心管进行编号。7.1.1.2 每管加入 800 L DNAzol，分别加入被检样品、阳性对照、阴性对照各 200 L，颠倒混匀，室
10、温静置 5 min；4 10 000 g 离心 10 min。7.1.1.3 取 900 L 上清，转入新的无菌无 DNA 酶 1.5 mL 离心管中，加入 500 L 预冷的无水乙醇，颠倒混匀，室温放置 3 min；4 10 000 g 离心 5 min。7.1.1.4 弃上清，沿管壁缓慢加入 1 mL-20 普通冰箱中预冷的 75%乙醇，颠倒混匀，4 10 000 g 离心 5 min。重复洗涤 2 次后，将离心管倒扣于吸水纸上，自然晾干或用移液器小心移去残液。7.1.1.5 用 50 L 8 mmol/L NaOH 溶液溶解沉淀，DNA 在-20 以下保存备用。7.1.2 核酸提取仪提取
11、 7.1.2.1 按照与核酸提取仪匹配的核酸提取试剂盒说明书提取。7.1.2.2 将提取的 DNA 转入新的无菌无 DNA 酶的 1.5 mL 离心管中，在-20以下普通冰箱中保存备用。7.2 荧光 qPCR 检测 7.2.1 反应体系的配制和分装 在试剂配制区进行。gD基因和gE基因的反应体系相同。设荧光qPCR反应管数为n，n为待检样品数+阳性对照管数+阴性对照管数，每个反应体系见表1，配制体系时建议按照n+1个反应进行配制，配制反应体系建议在冰盒中进行；配制好的反应液充分混匀后，按照每管18 L 分装于PCR反应管内，并做好标识。表1 每个反应体系配制表 组分 用量 2TaqMan Fa
12、st qPCR Master Mix 10 L 上游特异性PCR引物（10 mol/L）0.5 L 下游特异性PCR引物（10 mol/L）0.5 L TaqMan探针（10 mol/L）0.5 L 灭菌双蒸水 6.5 L 总体积 18 L 7.2.2 加样 DB21/T 32732020 4 在核酸提取区进行。每个反应管中按顺序分别加入2 L待检样品、阳性对照、阴性对照DNA溶液，盖好盖子后，PCR微量离心机瞬时离心30 s，转移至PCR扩增区。7.2.3 qPCR 扩增检测 在PCR扩增区进行。7.2.3.1 荧光通道 将PCR反应管放入荧光PCR仪内，设置探针：5端选择FAM荧光通道，3
13、端选择无（none）荧光。7.2.3.2 荧光 qPCR 反应条件 gD和gE基因荧光qPCR反应条件均为：94 3 min；94 15 s，60 45 s，收集荧光，40个循环。8 结果判定 8.1 阈值设定 阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增的最高点为准。8.2 质量控制 8.2.1 阴性对照无 Ct 值，且无典型的 S 型扩增曲线。8.2.2 阳性对照 FAM 通道 Ct 值30，且扩增曲线为典型的 S 型。8.2.3 以上要求需在同一次实验中同时满足，否则，本次实验无效，需重新进行。8.3 结果描述及判定 8.3.1 gD 基因检测结果 8.3.1.
14、1 阴性 无Ct值或Ct值38，且无典型的S型扩增曲线，报告为PRV核酸阴性。8.3.1.2 阳性 Ct值36，且扩增曲线为典型的S型，报告为PRV核酸阳性，但需进一步经gE基因检测来进行PRV野毒与疫苗毒的鉴别检测。8.3.1.3 可疑 36Ct值38，判定为可疑，需从提取DNA开始进行一次重复检测。如重复检测结果仍为36Ct值38，且扩增曲线均呈典型的S型扩增曲线，报告为PRV核酸阳性，但需进一步经gE基因检测来进行PRV野毒与疫苗毒的鉴别检测。8.3.2 gE 基因检测结果 8.3.2.1 阴性 无Ct值或Ct值38，且无典型的S型扩增曲线，报告为PRV野毒核酸阴性。DB21/T 327
15、32020 5 8.3.2.2 阳性 Ct值36，且扩增曲线为典型的S型，报告为PRV野毒核酸阳性。8.3.2.3 可疑 36Ct值38，判定为可疑，需从提取DNA开始进行一次重复检测。如重复检测结果仍为36Ct值38，且扩增曲线均呈典型的S型扩增曲线，报告为PRV野毒核酸阳性。8.3.3 鉴别方法 针对缺失包含gE基因在内的PRV活疫苗免疫猪只，如果gE基因检测阳性，则判定为PRV野毒核酸阳性；如果gD基因检测阳性而gE基因检测阴性，则判定为PRV疫苗毒阳性；如果gD基因和gE基因检测均为阴性，则判定为PRV核酸阴性，既无PRV野毒也无疫苗毒。针对未免疫缺失gE基因的PRV疫苗（gE/PRV
16、）的猪只，如果gD基因或gE基因检测结果为阳性，则判定为PRV野毒核酸阳性；如果gD基因和gE基因检测均为阴性，则判定为PRV核酸阴性。DB21/T 32732020 6 A A 附 录 A（规范性附录）溶液配制 A.1 8 mmol/L NaOH溶液的配制 称量0.32 g NaOH，溶解到1 000 mL灭菌去离子水中，混匀，分装，常温保存。A.2 0.02 mol/L pH7.2 磷酸盐缓冲液（PBS）的配制 A.2.1 0.2 mol/L磷酸氢二钠溶液：称取磷酸氢二钠（Na2HPO4 12H2O）71.64 g，先加适量去离子水溶解，最后定容至1000mL，混匀。A.2.2 0.2 mol/L磷酸二氢钠溶液：称取磷酸二氢钠（NaH2PO4 2H2O）31.21 g，先加适量去离子水溶解，最后定容至1000 mL，混匀。A.2.3 量取0.2 moL/L磷酸氢二钠溶液360 mL，0.2mol/L磷酸二氢钠溶液140 mL，称取氯化钠38 g，用无离子水溶解稀释至5000 mL，4保存。DB21/T 32732020 7 B B 附 录 B（规范性附录）引物和探针 名称 序列（5
