1、BJH化妆品补充检验方法BJH 202102化妆品中比马前列素等5种组分的测定2021-09-13发布国家药品监督管理局 发布化妆品中比马前列素等5种组分的测定(BJH202102)1范围本方法规定了化妆品中比马前列素、他氟乙酰胺、拉坦前列素、曲伏前列素、他氟前列素的测定方法。本方法适用于膏霜乳类、液体类、凝胶类、蜡基类、粉剂类化妆品中比马前列素等5种组分的定性和定量测定。2原理样品加饱和氯化钠溶液涡旋，分散混匀，经乙腈超声提取后，离心，取上清液加水稀释，采用高效液相色谱仪分离，质谱检测器检测。根据保留时间和特征离子对的相对丰度比定性，定量离子对峰面积定量，以标准曲线法计算含量。3试剂和材料除
2、另有规定外，本方法中所用试剂均为分析纯及以上规格，水为符合GB/T 6682规定的一级水。3.1 甲醇，色谱纯。3.2 乙腈，色谱纯。3.3 50%乙腈溶液：取乙腈（3.2）、水按体积比1:1混合，摇匀。3.4 甲酸，色谱纯。3.5 乙酸铵，色谱纯。3.6 氯化钠，分析纯。3.7 饱和氯化钠溶液：称取40g氯化钠（3.6），置于250mL磨口锥形瓶中，加入100mL水，超声15分钟，即得。3.8 含0.05%甲酸的5mmol/L乙酸铵溶液：称取0.3854g乙酸铵（3.5），加入0.5mL甲酸（3.4），用水溶解并稀释至1000mL，混匀。3.9 标准品：比马前列素、他氟乙酰胺、拉坦前列素、曲
3、伏前列素、他氟前列素的标准品，纯度均98%。标准品的中文名称、英文名称、CAS号、分子式、相对分子质量、结构式详见附录A中的表A.1。3.10 标准储备溶液：称取比马前列素、他氟乙酰胺、拉坦前列素、曲伏前列素、他氟前列素标准品各10mg（精确到0.00001g），分别置于10mL棕色容量瓶中，用甲醇（3.1）溶解并定容至刻度，摇匀。标准储备溶液的质量浓度均为1000mg/L。置于-18冰箱中避光保存。3.11 混合标准储备溶液：准确移取比马前列素、他氟乙酰胺、拉坦前列素标准储备溶液（3.10）和曲伏前列素、他氟前列素标准储备溶液（3.10）适量，用50%乙腈溶液（3.3）配制得比马前列素、他氟
4、乙酰胺、拉坦前列素浓度为10mg/L、曲伏前列素、他氟前列素浓度为100mg/L的混合标准储备溶液。置于-18冰箱中避光保存。4仪器和设备4.1高效液相色谱-三重四极杆质谱联用仪。4.2 分析天平：感量0.0001g和0.00001g。4.3 超声波清洗器。4.4 涡旋混合仪。4.5 高速离心机。5试样制备与保存样品应按照标签标示的贮存条件进行保存。取样前，应检查封口的完整性，观察样品的性状和特征，并使样品混匀。打开包装后，应尽可能快地取出所要测定部分进行分析，取样后，应将样品进行密封保存。6分析步骤6.1筛查用混合标准溶液取混合标准储备溶液（3.11）适量，用50%乙腈溶液（3.3）进行稀释
5、，配制成比马前列素、他氟乙酰胺、拉坦前列素浓度为2.5g/L，曲伏前列素、他氟前列素浓度为25g/L的筛查用混合标准溶液。6.2空白基质提取液称取空白试样0.2g（精确到0.0001g），置于50 mL离心管中，自“准确加入饱和氯化钠溶液3mL”起与样品同法处理（6.5），作为空白基质提取液。6.3基质混合标准中间溶液准确量取混合标准储备溶液（3.11）0.1mL，置于10mL棕色容量瓶中，用空白基质提取液（6.2）稀释至刻度，摇匀，制成比马前列素、他氟乙酰胺、拉坦前列素浓度为100g/L、曲伏前列素、他氟前列素浓度为1000g/L的基质混合标准中间溶液。6.4基质混合标准系列溶液分别精密量取
6、基质混合标准中间溶液（6.3）适量，用空白基质提取液（6.2）配制得基质混合标准系列溶液，各组分浓度见表1。基质混合标准系列溶液应现用现配。表1 比马前列素等5种组分的基质混合标准系列溶液浓度组分名称基质混合标准系列溶液浓度（g/L）比马前列素2.55102550他氟乙酰胺2.55102550拉坦前列素2.55102550曲伏前列素2550100250500他氟前列素25501002505006.5样品处理称取样品0.2g（精确到0.0001g），置于50mL离心管中，加入饱和氯化钠溶液（3.7）3mL，涡旋30s，分散均匀，准确加入乙腈（3.2）10mL，涡旋30s，超声提取20min，静置
7、至室温，以10000r/min转速离心5min，准确吸取上清液5mL，加水定容至10mL，混匀，经0.22m滤膜过滤后，滤液作为供试品溶液备用（供试品溶液可根据实际浓度进行适当稀释）。6.6仪器参考条件6.6.1色谱条件色谱柱：C18柱（100 mm2.1 mm，2.7m），或等效色谱柱；流动相：A为含0.05%甲酸的5mmol/L乙酸铵溶液（3.8），B为乙腈（3.2）。梯度洗脱程序见表2；流速：0.3mL/min；柱温：30；进样量：5L。表2 梯度洗脱程序时间（min）流动相A（%）流动相B（%）0.0080201.00802015.00455518.0059519.00802022.0
8、080206.6.2质谱条件离子源：电喷雾离子源（ESI源）；监测模式：正离子多反应监测模式（MRM），监测离子对及相关参数设定见表3。表3 比马前列素等5种组分监测离子对及相关参数设定组分名称母离子（m/z）子离子（m/z）CE（eV）比马前列素398.3*362.312317.220他氟乙酰胺438.3*288.318306.214拉坦前列素433.3*337.220397.314曲伏前列素501.2*321.210303.08他氟前列素453.3*335.110261.28*为推荐的定量离子。注：1.比马前列素与他氟乙酰胺应有效分离、拉坦前列素与他氟前列素应有效分离。2.当采用不同质谱仪
9、器时，仪器参数可能存在差异，测定前应将质谱参数优化到最佳。6.7定性判定取供试品溶液（6.5）与筛查用混合标准溶液（6.1）在相同分析条件下测定，样品中如呈现定量离子对和定性离子对的色谱峰，被测成分的特征离子峰保留时间与筛查用混合标准溶液（6.1）对应的保留时间一致，且选择的监测离子对的相对丰度比与相当浓度的筛查用混合标准溶液（6.1）的监测离子对的相对丰度比的最大偏差不超过表4的规定，则可以判定样品中存在对应的组分。表4 定性确证时相对离子丰度比的最大允许偏差相对离子丰度（k）k50%50%k20%20%k10%k10%允许的最大偏差20%25%30%50%6.8定量测定取基质混合标准系列溶
10、液（6.4）依次测定，以待测组分的系列浓度为横坐标，待测组分的峰面积为纵坐标，进行线性回归，绘制基质标准曲线，其线性相关系数应大于0.99。取供试品溶液（6.5）测定，将对应的定量离子对色谱峰面积代入基质标准曲线。按“7”项下公式，计算样品中待测组分的含量。6.9平行试验按以上步骤，对同一样品进行平行实验测定。6.10空白试验除不加试样外，均按上述测定条件和步骤进行。7结果计算结果按式（1）计算：=VDm1000(1)式中：样品中比马前列素等5种组分的质量分数，mg/kg；供试品溶液中比马前列素等5种组分的质量浓度，g/L；V样品定容体积，mL；m样品取样量，g；D稀释倍数（如未稀释则为1）。
11、在相同条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。8精密度和准确度多家实验室验证定量下限浓度回收率为80%110%，相对标准偏差小于11%（n=6），中、高浓度回收率为90%110%，相对标准偏差小于7.5%（n=6）。9检出限和定量限本方法中各组分的检出限、定量下限及取样量为0.2g时的检出浓度和最低定量浓度见表5。表5 比马前列素等5种组分的检出限、定量下限、检出浓度和最低定量浓度组分名称检出限（ng）定量下限（ng）检出浓度（mg/kg）最低定量浓度（mg/kg）比马前列素0.0040.01250.080.25他氟乙酰胺0.0040.01250.080.25拉坦前列
12、素0.0040.01250.080.25曲伏前列素0.040.1250.82.5他氟前列素0.040.1250.82.510图谱 1234 1 5图1 比马前列素等5种组分标准溶液的多反应监测色谱图 （1.比马前列素；2他氟乙酰胺；3.拉坦前列素；4.曲伏前列素；5.他氟前列素）附录A比马前列素等5种组分的相关信息表A.1 比马前列素等5种组分的中文名称、英文名称、CAS号、分子式、相对分子质量及结构式中文名称英文名称CAS号分子式相对分子质量结构式比马前列素Bimatoprost155206-00-1C25H37NO4415.57他氟乙酰胺Tafluprost ethyl amide1185851-52-8C24H33F2NO4437.52拉坦前列素Latanoprost130209-82-4C26H40O5432.59曲伏前列素Travoprost157283-68-6C26H35F3O6500.55他氟前列素Tafluprost209860-87-7C25H34F2O5452.53起草单位：中国食品药品检定研究院,上海市食品药品检验研究院主要起草人：王海燕、孙磊、王柯、郑荣、潘晨、许勇、路勇验证单位：广东省药品检验所、江西省药品检验检测研究院、浙江省食品药品检验研究院
